Histología · Técnicas y tinciones
Microscopía y tinciones: H-E, PAS, tricrómico, plata e inmunohistoquímica !
- Técnica
Los tejidos son casi transparentes; las tinciones les dan color para distinguir núcleos, citoplasma, fibras, moco y proteínas específicas.
Actualizado 2026-11-01
Véalo en 3D: Hígado · Piel · Estómago
Qué es
Un corte de tejido sin teñir apenas tiene contraste, así que se tiñe con colorantes que se unen a componentes químicos concretos. La hematoxilina-eosina (H-E) es la tinción de rutina; las tinciones especiales y la inmunohistoquímica responden preguntas que la H-E no resuelve, como si hay fibrosis, glucógeno, amiloide, microorganismos o qué proteína expresa un tumor.
Datos clave
- La hematoxilina es un colorante básico (catiónico): tiñe de azul-morado las estructuras ácidas, como el ADN del núcleo y el ARN de los ribosomas.
- La eosina es un colorante ácido (aniónico): tiñe de rosado las proteínas del citoplasma, el colágeno y las mitocondrias.
- Basófilo = se tiñe con hematoxilina; acidófilo o eosinófilo = se tiñe con eosina.
- Las tinciones histoquímicas (PAS, tricrómico, plata, Perls) se basan en una reacción química; la inmunohistoquímica usa anticuerpos contra un antígeno concreto.
- Metacromasia: el azul de toluidina tiñe de magenta (no de azul) los gránulos de los mastocitos, ricos en heparina.
Las tinciones que debe reconocer
| Tinción | Qué tiñe | Color | Uso clásico |
|---|---|---|---|
| Hematoxilina-eosina (H-E) | Núcleo y RER / citoplasma, colágeno | Azul-morado / rosado | Rutina de toda biopsia |
| PAS (ácido peryódico de Schiff) | Glucógeno, moco neutro, membranas basales, glucocáliz | Magenta | Glucógeno hepático, membrana basal glomerular, enfermedad de Whipple |
| Tricrómico de Masson | Colágeno frente a músculo y citoplasma | Colágeno azul o verde; citoplasma rojo | Grado de fibrosis en hígado (cirrosis) y riñón |
| Impregnación argéntica (reticulina) | Fibras reticulares (colágeno III), neuronas, algunos microorganismos | Negro | Armazón de hígado, ganglio y bazo |
| Verhoeff-van Gieson | Fibras elásticas | Negro | Láminas elásticas de las arterias |
| Rojo Congo | Amiloide | Rojo; verde manzana con luz polarizada | Amiloidosis |
| Azul de Prusia (Perls) | Hierro (hemosiderina) | Azul | Hemocromatosis, sobrecarga de hierro |
| Ziehl-Neelsen | Bacilos ácido-alcohol resistentes | Rojo sobre fondo azul | Tuberculosis |
| Inmunohistoquímica | Un antígeno concreto (citoqueratina, receptor de estrógenos, HER2, Ki-67) | Café en la técnica habitual | Origen y tipificación de tumores |
Marcadores
- H-E
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- Plata
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- Azul de Prusia
- Ziehl-Neelsen
- IHQ
En el laboratorio
- Al microscopio con H-E: núcleos azul-morado, citoplasma rosado, eritrocitos rojo intenso, colágeno rosado pálido y fibroso.
- Lo que no se tiñe también informa: los adipocitos y las células con mucina se ven vacíos porque los lípidos se disuelven en el procesamiento.
- Una célula plasmática se ve con citoplasma muy basófilo (mucho RER) y un halo claro junto al núcleo (Golgi).
Póngase a prueba
Piense la respuesta y toque la pregunta para verla.
¿Por qué el núcleo se tiñe de azul-morado con hematoxilina?
Porque la hematoxilina es un colorante básico que se une a estructuras ácidas, como los ácidos nucleicos del núcleo y el ARN ribosómico.
¿Qué tinción se usa para ver glucógeno y membranas basales?
El PAS (ácido peryódico de Schiff), que tiñe de magenta los carbohidratos.
¿Qué tinción permite graduar la fibrosis de una biopsia hepática?
El tricrómico de Masson, que separa el colágeno (azul o verde) del parénquima (rojo).
¿Qué hallazgo con rojo Congo confirma amiloide?
Depósitos rojos que, con luz polarizada, muestran birrefringencia verde manzana.
Véalo en 3D
Las estructuras de la anatomía 3D de Durgical donde se encuentra.
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Enfermedades relacionadas
Microorganismos
Contenido educativo sobre la estructura microscópica normal y su correlación clínica; no reemplaza el estudio de láminas ni la indicación de un profesional de la salud.
Fuentes: Stains 02 (Digital Histology, 2024); Stains 6 (Digital Histology, 2024); Stains 8 (Digital Histology, 2024); Stains 11 (Digital Histology, 2024).
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